Cuidamos tu salud

• Fiebre superior a 38,5ºC:
• Sospecha de endocarditis. 
• Pacientes portador de catéter venoso.

Pacientes con signos de respuesta inflamatoria sistémica:

• Fiebre >38,5ºC – hipotermia <36ºC
• Taquicardia >90 pm
• Hipotensión TAS <90mmHg
• Taquipnea >20pm
• Hipoxemia. (Pulsioxímetro) <90%
• Leucocitosis >12000-leucopenica < 4000
• Trombopenia <100.000
• INR >1,5 – TTPA >60
• Procalcitonina >0,5

El material necesario para la obtención y realización de los hemocultivos es:

• Frascos de hemocultivo (anaerobio y aerobio).
• Jeringas y agujas EV.
• Compresor.
• Gasas estériles.
• Alcohol de 70º
• Guantes estériles y guantes no estériles
• Clorhexidina acuosa o povidona yodada al 10%

1. El momento más idóneo para la extracción del hemocultivo es inmediatamente antes o durante el pico febril. Se recomienda que la extracción se realice lo antes posible después del inicio de la, o siempre que se sospeche de infección grave.
2. La muestra de sangre se debe de extraer siempre de una vena, utilizándose generalmente las del antebrazo. No debe de realizarse a través de catéteres intravenosos o intraarteriales salvo indicación expresa del médico.En caso de que el paciente ya esté tomando antibióticos la extracción se realizará inmediatamente antes de la administración de la dosis.
3. Preparar la piel de la zona de extracción para evitar la contaminación del hemocultivo con la flora cutánea de la piel:

• Procedemos al lavado de manos y a la colocación de guantes no estériles.
• Después de la palpación de la vena elegida para la extracción, se limpiará la zona con alcohol etílico de 70º durante 30 segundos
• A continuación se aplicará povidona yodada al 10% o clorhexidina cubriendo un área circular de 2-4 cm de diámetro, durante 30 segundos. Dejar secar y no tocar la zona, si fuera precisa una nueva palpación debe realizarse con guantes estériles.

4. Limpiar los tapones de los frascos de hemocultivo con povidona yodada al 10% o con clorhexidina al 0,5%, como mínimo durante 1 minuto, esperando lo suficiente para que el antiséptico se evapore, evitando su entrada en el interior al inocular la sangre.
5. Para obtener la muestra se precisa usar guantes estériles. Una vez puestos los guantes estériles, insertamos la aguja en la vena elegida y procedemos a la extracción de sangre.

• En adultos 10 ml por frasco.
• En niños, de 1 a 3 ml por frasco.

6. No se debe poner algodón u otro material no estéril sobre la aguja en el momento de sacarla de la vena.
7. Se inoculará rápidamente para evitar la coagulación de la sangre en la jeringa. Primero en el frasco anaeróbico, evitando la entrada de aire, y después el aerobio.
8. Invertir varias veces los tubos para mezclar la sangre y el medio de cultivo.
9. No se debe de cambiar de aguja cuando se introduzca la sangre en los frascos de hemocultivos, ya que el cambio de agujas no disminuye la tasa de contaminación y si aumenta el riesgo de pinchazo.
10. Identificar los tubos de hemocultivos con los datos del paciente, el médico, la fecha y la hora de la extracción y el orden (1º, 2º o 3º). También se tienen que identificar los botes con la etiqueta cuyo número de referencia tiene que coincidir con el de la petición para el laboratorio.
11. Depositar los hemocultivos junto con la petición también etiquetada dentro de una bolsa de esterilización debidamente cerrada.
12. Transportar inmediatamente los tubos de hemocultivos al laboratorio. Si no fuese posible hacerlo inmediatamente hay que mantener los  frascos a temperatura ambiente, nunca deben refrigerarse. 
13. La enfermera que haya realizado el hemocultivo deberá de registrar los siguientes datos en la hoja de enfermería del paciente.

• La fecha y la hora de la extracción del hemocultivo
• El número de identificación con el que hemos etiquetado los hemocultivos y la petición
• Anotar si ha habido alguna incidencia.